Marcos de Castro
EQUIPE
26/09/2026 • 05:01
Essa questão trata de um tema muito importante na área de parasitologia clínica, mais especificamente sobre a preservação de amostras fecais para análise laboratorial. Quando as amostras não podem ser enviadas imediatamente ao laboratório, é necessário utilizar fixadores para evitar alterações morfológicas dos protozoários e impedir o crescimento ou desenvolvimento de ovos e larvas de helmintos.
Existem vários fixadores usados corretamente na rotina laboratorial, como solução de formaldeído (5% ou 10%), Mertiolato-iodo-formaldeído (MIF) e Acetato de sódio-ácido acético-formaldeído (SAF). Esses são geralmente indicados e eficazes na preservação do material parasitológico.
Por outro lado, o fixador de Neelsen é conhecido por ser utilizado na coloração de bactérias do gênero Mycobacterium, principalmente para detectar o bacilo de Koch (tuberculose), e não é recomendado como fixador para preservação de amostras fecais parasitológicas. Portanto, ele não é indicado para preservar protozoários ou ovos/larvas de helmintos nas amostras fecais.
Assim, a alternativa correta, que indica um fixador NÃO recomendado para esse propósito, é o item c) Fixador de Neelsen.
Existem vários fixadores usados corretamente na rotina laboratorial, como solução de formaldeído (5% ou 10%), Mertiolato-iodo-formaldeído (MIF) e Acetato de sódio-ácido acético-formaldeído (SAF). Esses são geralmente indicados e eficazes na preservação do material parasitológico.
Por outro lado, o fixador de Neelsen é conhecido por ser utilizado na coloração de bactérias do gênero Mycobacterium, principalmente para detectar o bacilo de Koch (tuberculose), e não é recomendado como fixador para preservação de amostras fecais parasitológicas. Portanto, ele não é indicado para preservar protozoários ou ovos/larvas de helmintos nas amostras fecais.
Assim, a alternativa correta, que indica um fixador NÃO recomendado para esse propósito, é o item c) Fixador de Neelsen.